一、还原糖的检测

1、材料的选取：还原糖含量高，白色或近于白色，如苹果，梨，白萝卜。

2、试剂：斐林试剂(甲液：0.1g/mL的NaOH溶液，乙液：0.05g/mL的CuSO4溶液)，现配现用。

3、步骤：取样液2mL于试管中→加入刚配的斐林试剂1mL(斐林试剂甲液和乙液等量混合均匀后再加入)→水浴加热2min左右→观察颜色变化(白色→浅蓝色→砖红色)

模拟尿糖的检测

1、取样：正常人的尿液和糖尿病患者的尿液

2、检测方法：斐林试剂(水浴加热)或班氏试剂或尿糖试纸

4、结果：(用斐林试剂检测)试管内发生出现砖红色沉淀的是糖尿病患者的尿液，未出现砖红色沉淀的是正常人的尿液。

5、分析：因为糖尿病患者的尿液中含有还原糖，与斐林试剂发生反应产生砖红色沉淀，而正常人尿液中无还原糖，所以没有发生反应。

二、有丝分裂

1、材料：洋葱根尖(葱，蒜)

2、步骤：

(一)洋葱根尖的培养

(二)装片的制作

制作流程：解离→漂洗→染色→制片

解离:药液:质量分数为15%的盐酸,体积分数为95%的酒精(1:1混合液)

时间:3~5min.目的:使组织中的细胞相互分离开来

漂洗:用清水漂洗约10min.目的:洗去药液,防止解离过度,并有利于染色

染色:用质量浓度为0.01g/mL或0.02g/mL的龙胆紫溶液(或醋酸洋红液)染色3~5min

目的:使染色体着色,利于观察

制片:将根尖放在载玻片上,加一滴清水,并用镊子把根尖弄碎,盖上盖玻片,在盖玻片上再加一片载玻片，然后用拇指轻轻地按压载玻片。

目的:使细胞分散开来,有利于观察。

(三)观察：先在低倍镜下找到根尖分生区细胞：细胞呈正方形，排列紧密,有的细胞正在分裂。换高倍镜下观察：分裂中期→分裂前、后、末期→分裂间期。(注意各时期细胞内染色体形态和分布的特点)。其中，处于分裂间期的细胞数目最多。

三、观察质壁分离和复原

1、条件：细胞内外溶液浓度差，活细胞，大液泡。

2、材料：紫色洋葱鳞片叶外表皮细胞(具紫色大液泡)，质量浓度0.3g/mL的蔗糖溶液，清水等。

3、步骤：制作洋葱鳞片叶外表皮细胞临时装片→观察→盖玻片一侧滴蔗糖溶液,另一侧用吸水纸吸引→观察(液泡由大到小,颜色由浅变深,原生质层与细胞壁分离)→盖玻片一侧滴清水,另一侧用吸水纸吸引→观察(质壁分离复原)

4、结论:细胞外溶液浓度>细胞内溶液浓度，细胞失水质壁分离

细胞外溶液浓度<细胞内溶液浓度，细胞吸水质壁分离复原

四、低温诱导染色体加倍

1、原理：用低温处理植物分生组织细胞，能够抑制纺锤体的形成，以致影响染色体被拉向两极，细胞也不能分裂成两个子细胞，于是，植物细胞染色体数目发生变化。

2、方法步骤：

(1)洋葱长出约1cm左右的不定根时，放入冰箱的低温室内(4℃)，诱导培养36h。

(2)剪取诱导处理的根尖约0.5~1cm，放入卡诺氏液中浸泡0.5~1h，以固定细胞的形态，然后用体积分数为95%的酒精冲洗2次。

(3)制作装片：解离→漂洗→染色→制片

(4)观察，比较:视野中既有正常的二倍体细胞,也有染色体数目发生改变的细胞。

五、观察细胞的减数分裂

1、目的要求：通过观察蝗虫精母细胞减数分裂固定装片，识别减数分裂不同阶段的染色体的形态、位置和数目，加深对减数分裂过程的理解。

2、材料用具：蝗虫精母细胞减数分裂固定装片，显微镜。

3、方法步骤：

(1)在低倍镜下观察蝗虫精母细胞减数分裂固定装片，识别初级精母细胞、次级精母细胞和精细胞。

(2)先在低倍镜下依次找到减数第一次分裂中期、后期和减数第二次分裂中期、后期的细胞，再在高倍镜下仔细观察染色体的形态、位置和数目。

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